科学家有望开发出一种能改善实体瘤中T细胞疗法效力的潜在策略

针对实体瘤的T细胞疗法的一个基本限制就是失去炎性效应功能，比如细胞因子的产生和增殖等。科学家们通过进行临床前研究开发出了一种新方法，其或能“连环攻击”来帮助T细胞攻击实体瘤，研究者指出，靶向作用两个能控制与炎症相关的基因功能的调节子或许能使得模型中的T细胞扩增至少提高10倍，从而就会提高机体的抗肿瘤免疫活性和持久性。

治疗实体瘤的CAR-T细胞疗法的挑战之一就是一种被称之为T细胞耗竭的现象，即来自实体瘤细胞群的持续性抗原暴露会使得T细胞变得疲惫不堪，以至于其无法在机体中发起抗肿瘤反应，而对来自患者机体已经耗竭的T细胞进行工程化改造而进行的CAR-T细胞疗法则会导致“产品”的有效性降低，因为T细胞并没有足够的繁殖能力，也并未很好地记住其任务。

此前的观察性研究结果表明，炎性调节子Regnase-1或许能作为潜在的靶点来间接克服T细胞耗竭所产生的影响效应，因为其能在T细胞被破坏时引起过度炎性反应，使其恢复活力则能产生一定的抗肿瘤反应;研究者推测，同时靶向作用相关但又独立的Roquin-1调节子或能进一步增强机体的免疫反应。研究者Mai说道，这两个调节性基因中的每一个都会参与限制T细胞的炎性反应，基于此前研究结果，研究人员距离开发在实体瘤背景下更有希望的策略或许又近了一步。

随后研究人员利用CRISPR-Cas9基因编辑技术单独或共同敲出了健康供体T细胞中的Regnase-1和Roquin-1基因，目前研究人员正在一项I期临床试验中对两种不同的免疫受体进行研究，即靶向作用间皮素的M5 CAR 和靶向作用NY-ESO-1的8F TCR 这两种工程化的T细胞产品都不会靶向作用CD19，CD19是大多数获批的CAR-T细胞疗法所针对的抗原，因为这种抗原并不存在于实体瘤中。当进行CRISPR编辑后，T细胞会被扩张并输注到实体瘤小鼠模型中，研究者观察到，相比单独失活Regnase-1而言，双重敲除会使得所产生的工程化T细胞的数量是前者的10倍，且还能增加机体的抗肿瘤免疫活性及工程化T细胞的寿命，在一些小鼠中则会导致淋巴细胞的过度产生，从而引起毒性反应。

研究者表示，CRISPR是一种能完全消融诸如Regnase和Roquin靶向基因表达的游泳工具，从而就会产生一种明确的表型，然而在将这项研究工作转移到临床环境中时，或许还有其它策略需要考虑，比如条件基因调控的形式等。研究人员对于敲除这两个非冗余蛋白从而释放出的抗肿瘤潜力印象深刻，在实体瘤研究中，研究人员观察到了CAR-T细胞的扩张有限，但如果能够让每个T细胞都变得更加有效力或许就能复制产生更大数量的细胞，而这或许就给予攻击实体瘤提供了更好的机会。